實驗干貨 | 從分子克隆到細(xì)胞轉(zhuǎn)染全解析
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從分子克隆到細(xì)胞轉(zhuǎn)染全解析
通過表達(dá)或者敲低來研究基因?qū)δ艿挠绊懯羌?xì)胞生物學(xué)中常用的手段，熒光蛋白的發(fā)現(xiàn)也為研究追蹤細(xì)胞動態(tài)和變化提供了有效的工具。因此將某個基因引入細(xì)胞系，或者細(xì)胞系中敲除/敲低某個基因不可避免地需要經(jīng)過轉(zhuǎn)染這個過程。功能完整的質(zhì)粒需要從分子克隆開始小心的設(shè)計，避免造成功能元件的缺失或者artifacts。本文從分子克隆開始講述如何構(gòu)建***個在哺乳動物細(xì)胞中正常表達(dá)的質(zhì)粒，以及如何將該質(zhì)粒遞送（轉(zhuǎn)染）到細(xì)胞系中。 分子克隆 分子克隆的目的是把自己想要表達(dá)的基因安裝在表達(dá)載體上，這樣表達(dá)載體轉(zhuǎn)染進(jìn)細(xì)胞后可以啟動目的基因的表達(dá)。因此，表達(dá)載體或質(zhì)粒，需要包含必須的幾個原件來啟動目的基因的表達(dá)，同時方便細(xì)胞轉(zhuǎn)染后的篩選。 質(zhì)粒的基本組成部分
完整的質(zhì)粒通常包括：啟動子（promoter, 用以啟動目的基因的表達(dá)），目的基因(GOI)，終止子（terminator or polyA, 用以終止基因的表達(dá)），復(fù)制起始位點（ori, 用來質(zhì)粒的擴(kuò)增，真核表達(dá)載體有的含有兩個復(fù)制起始位點包含質(zhì)粒在大腸桿菌中擴(kuò)增的ori和f1 ori），抗性基因（用來在大腸桿菌和細(xì)胞中篩選陽性克隆）。有的真核細(xì)胞表達(dá)載體還含有其他原件，用來增強(qiáng)基因表達(dá)過程中的穩(wěn)定性（如AAV載體中的WPRE），方便病毒包裝（AAV和lenti載體中的兩端重復(fù)序列），控制多個基因表達(dá)（IRES和P2A元件等）。有的還會同時表達(dá)熒光蛋白方便后期細(xì)胞的篩選。經(jīng)典的質(zhì)粒圖譜如下（由SnapGene生成）：
分子克隆 分子克隆類似于打補(bǔ)丁，把其他地方得到的目的基因通過PCR或者酶切的方式得到，并粘貼到***個需要的表達(dá)載體上。因此整個過程設(shè)計PCR，酶切，片段回收，連接轉(zhuǎn)化，測序，質(zhì)粒擴(kuò)增和抽提。簡短的示意圖以Takara的In Fusion為例： 1 PCR PCR的目的是為了得到可以用來連接的目的基因，通過兩端引物的擴(kuò)增得到自己想要的目的序列，在這個過程中可以通過引物的設(shè)計添加或者刪除酶切位點，引入突變位點等。需要注意的是，如今市面上多種多樣的高保真酶可以確保堿基突變的概率很低，甚至可以用這些高保真酶擴(kuò)增長片段，高GC，多序列重復(fù)的載體序列。 2 酶切 得到的PCR產(chǎn)物需要插入到自己的表達(dá)載體上，通常質(zhì)粒為超螺旋閉環(huán)狀，因此需要合適的限制性內(nèi)切酶切開對應(yīng)位點，以方便目的基因的插入。切開的質(zhì)粒通常需要回收骨架部分，舍棄掉原來位置上的基因。建議使用NEB***的限制性內(nèi)切酶，沒有星號活性，Buffer基本通用，可以靈活的調(diào)節(jié)和控制酶切反應(yīng)及時間。對于沒有想要的酶切位點的載體，可以利用步驟1中的PCR方式獲取。 3 片段回收 為了獲得高純度，去除反應(yīng)液中的離子，通常需要DNA瓊脂糖凝膠電泳來回收酶切或PCR得到的目的基因和載體（膠回收）。通常***后的洗脫用去離子水或者雙蒸水，以方便下***步的使用。 4 連接轉(zhuǎn)化 常用的分子克隆手段有很多，如普通的酶切連接（依賴T4 DNA 連接酶），In Fusion (依賴于外切酶)，GoldenGate (依賴TypeIIS型限制性內(nèi)切酶創(chuàng)造的獨特切口），Gibson組裝（外切酶，聚合酶，連接酶同時作用），CPEC（高保真DNA聚合酶）等。連接轉(zhuǎn)化后的產(chǎn)物通常轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞中，以獲得單克隆。 5 測序 重組得到的單克隆菌落有的時候會有錯配或者突變，堿基的缺失等，因此需要挑選單克隆菌落測序。通常測序前會通過菌落PCR和酶切驗證，但是如前所說，現(xiàn)在的DNA高保真聚合酶大大減少了突變的發(fā)生，而目前的連接方法組裝正確率都很高，因此為節(jié)約時間，我選擇平板隨機(jī)挑選兩個菌落送測。 6 質(zhì)粒擴(kuò)增和抽提 測序成功的質(zhì)粒可以重新轉(zhuǎn)化感受態(tài)，挑取單克隆培養(yǎng)后選擇小提/中提/大提質(zhì)粒。值得注意的是，用于轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒***好使用去內(nèi)毒素質(zhì)粒提取盒。
轉(zhuǎn)染 轉(zhuǎn)染前的準(zhǔn)備
轉(zhuǎn)染之前需要準(zhǔn)備細(xì)胞，***般細(xì)胞復(fù)蘇后傳1-2代觀察形態(tài)和狀態(tài)，如果條件嚴(yán)格的話還需要檢查是否有支原體污染或者黑膠蟲等。細(xì)胞狀態(tài)良好的，形態(tài)完整活力較好的，匯合度達(dá)到80-90%后可以接種細(xì)胞。接種細(xì)胞前需要計數(shù)，有條件的推薦RWD***的細(xì)胞計數(shù)儀。以293T為例***個示意的形態(tài)圖(匯合度>90%)和細(xì)胞狀態(tài)如下：
▲ 10倍鏡下狀態(tài)
轉(zhuǎn)染 經(jīng)典的轉(zhuǎn)染方式包括磷酸鈣，脂質(zhì)體（以Thermo的lipo2000/3000為代表），PEI （25, 0000 or 40, 000），慢病毒侵染等，每周轉(zhuǎn)染方式大同小異，具體原理就不******贅述。以下以經(jīng)濟(jì)實用的PEI轉(zhuǎn)染為例： 1 準(zhǔn)備試劑 無血清培養(yǎng)基(DMEM or opti-MEM), PEI (1mg/mL)，待轉(zhuǎn)染的DNA質(zhì)粒。 2 準(zhǔn)備DNA-PEI復(fù)合物 以24孔板為例，500ng的DNA稀釋到50ul的無血清培養(yǎng)基中，然后按1：3（1μL PEI）的比例加入PEI （需要自己調(diào)試PEI的比例1：1-1：5，和細(xì)胞類型和不停品牌的PEI質(zhì)量都有***定關(guān)系），混勻后靜止15min，***次性將復(fù)合物滴入到待轉(zhuǎn)染的孔。 3 （可選） 6-8小時后去除培養(yǎng)基，更換為新鮮的完全培養(yǎng)基（DMEM+10% FBS）。 4 24小時后熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染結(jié)果
通常轉(zhuǎn)染效率很高，大于90%：
▲ 瑞沃德細(xì)胞計數(shù)儀，5倍鏡下狀態(tài)
總結(jié) 現(xiàn)在的分子克隆和細(xì)胞轉(zhuǎn)染的教程很多，而且很多商***的產(chǎn)品都會有詳細(xì)的介紹，從原理到具體操作。本人推薦常用到的幾個網(wǎng)站和學(xué)習(xí)資源，如SnapGene，Addgene, Takara官網(wǎng)，Thermo和NEB，F(xiàn)uGENE, ATCC。他們基本上是分子和細(xì)胞領(lǐng)域的權(quán)威和產(chǎn)品創(chuàng)新者，很多***內(nèi)的產(chǎn)品都是在此基礎(chǔ)上做出來的平替。這些網(wǎng)站無論是在宣傳還是產(chǎn)品介紹上都給出了很權(quán)威且詳細(xì)的介紹。
(文章來源于儀器網(wǎng))
